Causas de las repeticiones cíclicas: las dosis seminales o el verraco

Enric Marco
20-nov-2020 (hace 4 años 3 días)

Las repeticiones cíclicas se producen de 18 a 24 días y de 38 a 44 días post-cubrición. Una cerda repite cíclicamente (manteniendo la duración normal de un ciclo estral: 18-24 días o sus múltiplos) cuando la fertilización de los óvulos ha fallado o cuando se han perdido todos los embriones fecundados dentro de la primera mitad del ciclo estral (<10-12 días).

En condiciones normales las repeticiones cíclicas deberían suponer un porcentaje muy pequeño de las cubriciones < 5%.

Causas relacionadas con las dosis seminales

1. Calidad de las dosis seminales: Afectará a la fertilidad y la prolificidad. En la calidad de las dosis seminales intervienen distintos factores, pero quizás los más importantes sean la edad de las dosis o los que afecten a su conservación, como la calidad del agua, diluyente, condiciones de conservación (variaciones de temperatura), etc.

Tabla 1. Influencia de varios aspectos de la calidad de semen sobre los resultados de la IA

Frecuencia Índice Partos (%) NV
Edad de la dosis 14/51 -18 -1
Conservación 8/51 -7 -0,7
Calidad agua 8/51 -7 -0,6
Calidad extender 8/51 -17 -1,2
Dilución subóptima 5/51 -10 -1
Morfología 5/51 -11 -1
Verracos subfértiles 3/51 -51 -5,8

Flowers, B. 1996. Successful AI programs. Proc. Swine. Reprod. Symp. Am. Soc. Therio, pp 15-25.

1.1. Edad de las dosis

La edad de las dosis afectará a la calidad espermática, reduciendo su viabilidad y su capacidad fertilizadora.

1.2. Conservación

Evidentemente una mala conservación actuará envejeciendo más rápidamente los espermatozoides y, por lo tanto, precipitando los efectos mostrados en el gráfico anterior. En la conservación influyen factores como la calidad de agua, el diluyente o tipo de plástico empleado.

Tabla 2. Fertilidad dependiendo la conservación usando un diluyente de corta duración (BTS)

Horas de conservación Fertilidad (%) Nacidos totales Nacidos vivos
4-14 67,7a 11,96a 10,94a
28-38 69,8a 11,73b 10,73b
52-62 64,6b 11,61b 10,64b

a,bdistintas letras en la misma columna indican una diferencia significativa con p<0,05. Fuente Hofmo, 1991

En el caso de usar diluyentes de larga duración las diferencias empiezan a observarse a partir del 6º día (ver tabla).

Tabla 3. Fertilidad y tamaño de camada en IA usando dos diluyentes distintos. J. Gadea. 2003

Días A B
Fertilidad (%) Nacidos totales Fertilidad (%) Nacidos totales
2-3 170 85,9 10,3 172 86,1 10,2
3-4 164 86,6 9,2 151 84,1 10,0
4-5 188 85,1 9,0* 183 86,3 10,4*
5-6 201 78,6* 9,4 202 85,6* 9,7

*p<0,01. Fuente: Kuster y Althouse (1999)

Los sistemas de fabricación de las dosis seminales están automatizados en la mayoría de los centros de inseminación comerciales, utilizando distintos sistemas de contenedores. Las bolsas plásticas consiguen llevar antes el semen diluido a la temperatura de conservación que los tubos. Pero también influye el tipo de plástico utilizado. Se ha podido comprobar que plásticos que incluyen entre sus componentes lactona cíclica y bisphenol A diglycidyl ether (BADGE) afectan negativamente la fertilidad de las cerdas, pero curiosamente no afectan los parámetros de motilidad de los espermatozoides.

1.3. Dilución sub-óptima

Las diluciones sub-óptimas son quizás uno de los problemas más frecuentes. Con la implantación de la inseminación post-cervical y la reducción de volúmenes empleados las concentraciones de espermatozoies, son más críticas que nunca. Se recomienda el mantenimiento de concentraciones de espermatozoides de al menos 2,5 x 109/ 80 ml, en caso de dosis convencionales, o de 1,5 x 109/ 50-60 ml, en caso de dosis post-cervicales. Concentraciones inferiores afectarán principalmente la prolificidad pero, en caso de ser muy bajas, también la fertilidad.

1.4. Morfología

Numerosos estudios demuestran que la comprobación de la motilidad y la morfología de los espermatozoides está relacionada con su capacidad fertilizante por lo que, en caso de calidad reducida, sería bueno aumentar las concentraciones para compensar y reducir los tiempos de conservación.

Figura 2. Motilidad total (Tmot): el porcentaje de espermatozoides que tienen movimiento de la cabeza. Sungwon Park, 2013

1.5. Verracos sub-fértiles

No todos los verracos poseen la misma capacidad fertilizante. Diferencias genéticas entre ellos, su edad, factores como la nutrición, temperatura, vacunaciones o frecuencia de trabajo, son algunos de los factores que pueden afectar la calidad fertilizante de su semen.

Tabla 4. Efecto de la edad del verraco sobre la fertilidad de la dosis seminal

Edad del grupo N1 N2 Tasa de partos (%) Tamaño de camada viva (media ± SEM)
Verracos jóvenes (7-10 meses, n=5) 11 55 65,00 (117/180)a 11,62 ± 0,51a
Verracos maduros (18-33 meses, n=7) 25 175 87,24 (1259/1443)b 10,53 ± 0,25a
Verracos viejos (51-61 meses, n=5) 14 70 84,74 (372/439)b 11,13 ± 0,23a
TOTAL 11-25 300 84,77 (1747/2062) 10,87 ± 0,23

Los valores con letras distintas dentro de cada columna son significativamente distintos (P<0,001; x2 = 29,99 - 61,42). El efecto del verraco sobre la tasa de partos es significativo (P < 0,005). N1 y N2denotan el número de eyaculados usados por verraco y por grupos, respectivamente. Tsakmakidis, I.A. et al. 2012.

2. Calidad del proceso de inseminación

La calidad del proceso de inseminación también tendrá repercusión sobre el porcentaje de repeticiones. Una deficiente detección de celos, que puede llevar a un momento erróneo de inseminación, o un número de dosis insuficientes pueden tener un impacto importante sobre los resultados.

Tabla 5. Influencia de varios aspectos sobre los resultados de la IA. Flowers, B. 1996

Frecuencia Indice Partos (%) NV
Deficiente detección de celos 15/50 -15 -0,6
Bajo número de IA 10/50 -8 -0,3
Momento IA erróneo 8/50 -7 -0,4
Técnica IA pobre 5/50 -8 -0,5

3. Manejo post-inseminación

El estrés en todas sus formas puede ser uno de los responsables de que las cerdas repitan en modo cíclico. Hay dos momentos especialmente críticos:

Tabla 6. Influencia del manejo post-IA. Flowers, B. 1996

Frecuencia Índice de partos (%) Nacidos vivos
Mezcla de cerdas 8//19 -7 -1,8
Movimiento de cerdas 7/19 -10 -1,2

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Repeticiones cíclicas