Concentración y volumen recomendado para la fabricación de dosis de semen porcino - Parte II
En la primera parte, hablamos sobre como influye el momento de inseminación a la hora de la fabricación de dosis de semen porcino. En esta ocasión se expondrá como varía la concentración y volumen de semen, en base a la técnica de inseminación artificial.
Según un estudio realizado por Hernandez-Caravaca et al., 2012, donde se evaluó el rendimiento reproductivo de cerdas multíparas (Landrace/ Large White) de 2 a 7 partos y de 20 machos (Duroc) con tratamientos:
- (IAC) cervical: 3 mil millones espermatozoides/80 ml
- (Post IAC 1) post-cervical con 1,5 mil millones espermatozoides/40 ml
- (Post IAC) post-cervical usando mil millones espermatozoides/26 ml
Se determinó que los datos de parto y tamaño de la camada obtenidos con las técnicas postcervicales utilizadas fueron comparables o incluso mejores que los resultados de la técnica cervical.
La técnica postcervical usando mil millones espermatozoides/26 ml se recomienda en cerdas con 2-5 partos. Cuando se inseminan cerdas de 6 partos, se indica el uso de la técnica postcervical con 1,5 mil millones espermatozoides/40 ml, ya que la reducción de la contractilidad uterina prolonga la fase de tránsito en el útero, reduciendo la calidad del esperma y, por lo tanto, reduce la capacidad de los espermatozoides para entrar en el útero, oviductos y para fertilizar.
Tabla 1: Parámetros reproductivos obtenidos de cerdas con 2-3 (A),4-5 (B) y mayor o igual a 6 (C) partos inseminadas con cervical: 3 mil millones espermatozoides, postcervical 1: 1,5 mil millones espermatozoides y postcervical 2: mil millon espermatozoides)
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a,b: Diferentes superíndices en la misma columna y para el mismo número de paridad indican valores significativamente diferentes (p < 0,01).
Garcia-Vazquez et al., 2019, además, comenta que, en condiciones de campo, los parámetros de dosis de semen más utilizados son de 1,5 mil millones de espermatozoides en un volumen de 45-50 ml en la técnica postcervical, aunque algunos estudios han descrito resultados satisfactorios con 0,75- mil millones de espermatozoides.
En otro estudio realizado por Kelly Jaqueline et al., 2020, donde se asignaron un total de 636 primerizas en un análisis factorial 2x2, con dos técnicas de inseminación artificial (IAC e IAIU) y dos concentraciones de dosis de semen (1,5 mil millones espermatozoides/50 ml o 2,5 mil millones espermatozoides/80 mL) demostraron que los parámetros reproductivos no se vio afectados por el uso de IAIU o IAC usando 1.5 o 2.5 mil millones de espermatozoides en 50 u 80 ml, respectivamente, lo que sugiere la posibilidad de utilizar IAC con 1,5 mil millones de espermatozoides/50 ml en primerizas.
Tabla 2: Rendimiento reproductivo, sangrado y reflujo de semen de dorados sometidos a inseminación artificial intrauterina (IUAI) o inseminación cervical (CAI) con diferentes tamaños de dosis de semen (1,5 mil millones espermatozoides / 50 ml o 2,5 mil millones espermatozoides / 80 ml)
IAC | IAIU | P- Valores | |||||
Variables | 1.5 | 2.5 | 1.5 | 2.5 | AI(1) | Dosis(2) | AlxDosis |
Número de primíparas (n) | 158 | 159 | 90 | 97 | |||
Preñez (%) | 96.5 +/- 1.7 | 97.7 +/- 1.3 | 98.0 +/- 1.5 | 95.3 +/- 2.4 | 0.86 | 0.68 | 0,23 |
Parto (%) | 93.7 +/- 2.4 | 95.6 +/- 1.6 | 94.4 +/- 2.4 | 93.8 +/- 2.4 | 0.78 | 0.74 | 0,54 |
Nacidos totales (n) | 14.5 +/- 0.2 | 14.5 +/- 0.2 | 14.8 +/- 0.3 | 14.5 +/- 0.3 | 0.69 | 0.65 | 0,45 |
Nacidos vivos (n) | 13.5 +/- 0.3 | 13.7 +/- 0.3 | 13.9 +/- 0.3 | 13.5 +/- 0.3 | 0.63 | 0.68 | 0,34 |
Semen (%)3 | 27.5 +/- 4.0 | 29.8 +/- 4.1 | 29.1 +/- 5.2 | 38.0 +/- 4.0 | 0.27 | 0.20 | 0,48 |
Sangrado (%)3 | 30.5 +/- 4.0 | 34.2 +/- 4.2 | 20.8 +/- 4.5 | 29.6 +/- 4.9 | 0.08 | 0.13 | 0,48 |
Valores presentados como medias LS ± media del error estándar.
1 Técnica de inseminación artificial (IA) aplicada (CAI o IUAI).
2 Número de espermatozoides y volumen de dosis de inseminación (1,5 mil millones/50 ml o 2,5 mil millones/80mL).
3 La presencia de reflujo o sangrado durante la inseminación en al menos uno de los inseminaciones realizadas en cada primeriza (si/no).
Como mencionamos en la primera parte, los métodos de análisis para la obtención de estas dosis son sumamente importantes, desde Genox recomendamos el uso del sistema CASA por la precisión del mismo sobre valores como motilidad, progresividad, penetración del mucus, hipermotilidad, vuelta en circulo y variables mas especificas de la cinética espermática. En granjas comerciales por su elevado costo se puede optar por la cámara de Burker, el fotocolorimetro o Isperm.
Referencias:
- Bortolozzo F.P., Goldberg A.M.G. & Wentz I. 2008. Até onde é possível reduzir o número de espermatozóides empregados na inseminação. Acta Scientiae Veterinariae. 36 (Supl 1): s17-s26.
- Iván Hernández-Caravacaa, M. José Izquierdo-Rico, Carmen Matás , Juan A. Carvajal , Luis Vieiraa, Dario Abril, Cristina Soriano-Úbeda, Francisco A. García–Vázquez. Reproductive performance and backflow study in cervical and post-cervical artificial insemination in sows. 2012. Animal Reproduction Science 136.
- Kelly Jaqueline Will, Danielle Fermo Silveira, Mariáh Negri Musskopf, Ana Paula Gonçalves Mellagi, Fernando Pandolfo Bortolozzo, Rafael Kummer, Rafael da Rosa Ulguim. Reproductive performance in gilts following applications of different insemination doses and techniques. 2020.Theriogenology. THE 15745.
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